Могут ли СМИ помочь справиться с распространением западных цветочных трипсов и грибных мошек?
Западные цветочные трипсы, Frankliniella occidentalis , и грибные мошки, Bradysia spp., Являются основными насекомыми-вредителями в системах тепличного производства. У обоих насекомых-вредителей есть этапы жизни, которые находятся в среде выращивания: предкуколки и куколки для западных цветочных трипсов и личинки для грибных мошек.

Недавно мы провели серию экспериментов, повторяемых с течением времени, чтобы с научной точки зрения определить, оказывает ли среда для выращивания, содержащая бактерии и арбускулярный микоризный гриб, отрицательное влияние на куколки западных цветочных трипсов и личинок грибных комаров в лабораторных условиях. Ниже приведены реализованные нами процедуры и полученные результаты.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Это исследование включало два эксперимента, повторяемых во времени, для оценки воздействия различных сред для выращивания на куколки западных цветочных трипсов и личинок грибных мошек, соответственно.

ЭКСПЕРИМЕНТ ПЕРВЫЙ: ЗАПАДНЫЕ ЦВЕТОЧНИКИ
Западные цветочные трипсы, Frankliniella occidentalis , использованные в экспериментах, поддерживались в лаборатории на стручках зеленой фасоли ( Phaseolus vulgaris ) и пчелиной пыльце (урожай прерий: Kansas Wildflower) при температуре 75-81 ° F, относительной влажности от 50 до 60% и постоянной свет на факультете энтомологии Государственного университета Канзаса.

В ходе экспериментов изучалось влияние трех различных сред на куколки западного цветочного трипса. Тремя различными средами для выращивания (обработками) были: 1) Berger BM1, состоящий из 75-85% мха сфагнового торфа, перлита, вермикулита и смачивающего агента; 2) Pro-Mix BX + Mycorrhizae (Premier Horticulture), состоящий из 75-85% канадского сфагнового торфяного мха, перлита, вермикулита, доломитового и кальцитового известняка, смачивающего агента и гриба арбускулярной микоризы ( Glomus intraradices ); и 3) Pro-Mix BX + Biofungicide + Mycorrhizae (Premier Horticulture), состоящий из 75-85% канадского сфагнового торфяного мха, перлита, вермикулита, доломитового и кальцитового известняка, увлажняющего агента, бактерии ( Bacillus pumilus ) и арбускулярного микоризного гриба. Glomus intraradices).

Эксперименты были организованы как полностью рандомизированный план. Было три обработки (среда для выращивания) с пятью повторами на обработку. Эксперименты проводились в 2019 г. и повторились в 2020 г.

Используя щетку из верблюжьей шерсти с мягким наконечником, 20 куколок западных цветочных трипсов перенесли из основной колонии в 473 мл (16 жидких унций) гастрономических контейнеров с приблизительно 400 мл (13,5 жидких унций) влажной среды для выращивания. Обработки готовили путем смешивания 1,6 л (0,42 галлона) водопроводной воды с каждой питательной средой, которую затем увлажняли дополнительными 40 мл (1,4 жидких унций) водопроводной воды с помощью пульверизатора перед добавлением куколок западных цветков трипса. Крышки контейнеров с деликатесами были модифицированы с помощью сетки от насекомых [0,2 x 0,8 мм (0,007 x 0,031 дюйма): Greentek, Inc.] для вентиляции, и 12 отверстий были вставлены в дно с помощью рассекающего зонда, который позволял любой лишней жидкости стекать или реабсорбироваться питательной средой. Кроме того, отверстия предохраняли куколки западного цветочного трипса от утопления или высыхания питательной среды.

Участок желтой клейкой карточки размером 5 х 7,5 см (2 х 3 дюйма) приклеивали горячим клеем к крышке каждого контейнера для гастрономов. Каждый контейнер для гастрономов помещали в пластиковую чашку Петри [1,5 x 14 см (0,6 x 5,5 дюйма)], выдерживали при температуре от 75 до 81 ° F и при постоянном освещении. Контейнеры для деликатесов с пластиковыми чашками Петри помещали в контейнеры Sterilite емкостью 30 л (7,9 галлона) (Sterilite Corp.) группами по пять (в соответствии с каждой обработкой) и крышки контейнеров [с шестью, 0,5 см (0,19 дюйма) ) отверстия на одинаковом расстоянии] были заменены. Через 21 день каждый участок желтых клейких карточек проверяли и регистрировали количество пойманных взрослых особей западных цветочных трипсов. Использование желтой липкой карты было косвенной оценкой смертности куколок западных цветочных трипсов.

ЭКСПЕРИМЕНТ ВТОРОЙ: ГРИБЫ ГНАЦ
Комар грибной , Bradysia sp. номер coprophila , использованные в экспериментах личинки содержались в пластиковых контейнерах объемом 8 л (2,1 галлона) с плотно закрывающимися крышками. В крышках прорезали отверстия [11,5 x 22,5 см (4,5 x 8,8 дюйма)] с помощью фильтра от насекомых [0,2 x 0,8 мм (0,007 x 0,031 дюйма): Greentek, Inc.], приклеенного к крышкам горячим способом для обеспечения вентиляции. Используя контейнер объемом 6 л (1,5 галлона), питательную среду (Berger BM1), состоящую из 75-85% мха сфагнового торфа, перлита и вермикулита, смочили примерно 1,6 л (0,42 галлона) водопроводной воды, пастеризованной в микроволновой печи ( Panasonic Inverter: Panasonic Consumer Electronics) на 1250 Вт в течение 20 минут, а затем охлаждение.

Два клубня [240 граммов (8,4 унции) каждый] картофеля (Solanum tuberosum) измельчали ​​до мелких частиц, смешивали с 125 мл (4,2 жидких унции) водопроводной воды, используя кухонный комбайн, а затем равномерно смешивали с растущим средний вручную. Примерно 3 л (0,79 галлона) питательной среды и картофельной смеси помещали в контейнер емкостью 8 л (2,1 галлона). Шестьдесят граммов (2,1 унции) овса (Avena sativa) (The Quaker Oats Co.) помещали в две стопки, расположенные в противоположных углах контейнера на поверхности питательной среды. Первоначально овес увлажняли 40 мл (1,3 жидкой унции) водопроводной воды, используя пластиковую бутылку с распылителем на 946 мл (31,9 жидкой унции).

После этого питательную среду в контейнере ежедневно увлажняли. Примерно от 500 до 1000 взрослых грибных комаров (± 4 дня после появления всходов) аспирировали в пластиковый флакон объемом 9 драм (33 мл или 1,1 жидких унций) из основной колонии и добавляли в контейнер, чтобы спарившиеся самки могли откладывать яйца. Взрослые грибковые комары добавляли в контейнер на два-три дня. Колонии содержались в лаборатории при температуре от 75 до 81 ° F, относительной влажности от 50 до 60% и при постоянном освещении на факультете энтомологии Университета штата Канзас.

Для выделения личинок грибных комаров второй и третьей возрастных стадий стеклянную чашку Петри (100 x 15 мм) выстилали фильтровальной бумагой P8 Fisherbrand диаметром 9 см (Fisher Scientific) и поместили в емкость для хранения пищевых продуктов емкостью 750 мл (25,3 жидких унций) ( Ziploc: SC Johnson). Примерно 9,5 г (0,33 унции) питательной среды с картофельным пюре помещали поверх фильтровальной бумаги и увлажняли из пульверизатора, избегая застоя воды. На контейнер для хранения закрыли крышку, и из основной колонии было собрано от 500 до 1000 взрослых особей. Взрослые особи были помещены в контейнеры, чтобы самки могли откладывать яйца. Через 11 дней личинки второй и начала третьей возрастных стадий присутствовали для
использования в экспериментах.

В экспериментах исследовали влияние различных сред на личинки грибных комаров второй и первой трети возрастных стадий. Четырьмя различными средами для выращивания (обработками) были: 1) Berger BM1, состоящий из 75-85% мха сфагнового торфа, перлита, вермикулита и смачивающего агента; 2) Pro-Mix BX + Mycorrhizae, состоящий из 75-85% канадского сфагнового торфяного мха, перлита, вермикулита, доломитового и кальцитового известняка, смачивающего агента и гриба арбускулярной микоризы ( Glomus intraradices ); 3) Pro-Mix BX + Biofungicide + Mycorrhizae, состоящий из 75-85% канадского сфагнового торфа, перлита, вермикулита, доломитового и кальцитового известняка, смачивающего агента, бактерии ( Bacillus pumilus).) и арбускулярный микоризный гриб (Glomus intraradices); и 4) пастеризованный Berger BM1, состоящий из 75-85% мха сфагнового торфа, перлита, вермикулита, смачивающего агента и картофельного пюре.

Обработка пастеризованного и протертого картофеля была добавлена ​​к эксперименту с грибковыми комарами, но не к эксперименту с западным цветочным трипсом, потому что куколки западного цветочного трипса не питаются, поэтому источник пищи не требовался. Однако личинки грибных комаров питаются, поэтому для оценки смертности личинок без источника пищи потребовалась обработка, аналогичная нашим условиям выращивания. Эксперимент был настроен как полностью рандомизированный план. Было четыре обработки (среда для выращивания), включая контроль (пастеризованное картофельное пюре Berger BM1 +), с пятью повторами на обработку. Эксперименты проводились в 2019 г. и повторились в 2020 г.

С помощью стеклянной пипетки 20 личинок грибных комаров второй - начала третьей возрастной стадии помещали в 473 мл (16 унций) гастрономических контейнеров с приблизительно 300 мл (10,1 жидких унций) влажной среды для выращивания. Контрольный образец с использованием пастеризованного Berger BM1 с картофельным пюре готовили, как описано выше. Остальные обработки были приготовлены путем смешивания 1,6 л (0,42 галлона) водопроводной воды с питательной средой, которые были увлажнены дополнительными 40 мл (1,4 жидких унций) водопроводной воды с использованием пластикового пульверизатора перед добавлением личинок грибных комаров.

Крышки контейнеров с деликатесами были модифицированы фильтром от насекомых [0,2 x 0,8 мм (0,007 x 0,03 дюйма): Greentek Inc.] для вентиляции, и 12 отверстий были вставлены в дно с помощью рассекающего зонда, чтобы вся лишняя жидкость могла стекать или реабсорбироваться. питательной средой. Кроме того, отверстия предотвращали утопление личинок грибного комара и высыхание питательной среды. Участок желтой клейкой карточки размером 5 х 4 см (2 х 1,6 дюйма) приклеивали горячим клеем к крышке каждого контейнера для гастрономов. Каждый контейнер для гастрономов помещали в пластиковую чашку Петри [1,5 x 14 см (0,6 x 5,5 дюйма)], поддерживали температуру от 24 до 75 до 81 ° F и при постоянном освещении.

Контейнеры для деликатесов с пластиковыми чашками Петри помещали в стерилитовые контейнеры емкостью 30 л (7,9 галлона) группами по пять (в соответствии с каждой обработкой) и крышками контейнеров [с шестью отверстиями по 0,5 см (0,19 дюйма), расположенными на равном расстоянии] были заменены. Через 21 день каждую желтую клейкую карточку проверяли и регистрировали количество пойманных взрослых грибных комаров. Использование желтой липкой карты было косвенной оценкой смертности личинок грибных комаров.

АНАЛИЗ ДАННЫХ
Данные были проанализированы с использованием дисперсионного анализа (ANOVA, P = 0,05) (SAS Institute, 2012) с лечением в качестве основного эффекта. Средние индивидуальные лечебные средства разделяли с использованием критерия наименьшего значимого различия Фишера, когда ANOVA указывал на значительный эффект лечения.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Три среды выращивания не оказали значительного влияния на среднее количество взрослых особей западных цветочных трипсов, отловленных на желтых липких карточках в 2019 г. (F = 0,83; df = 2, 6; P = 0,46) (Рисунок 1) или в 2020 г. (F = 1,16; df = 2, 6; P = 0,36) (рисунок 2). Тем не менее, наблюдался значительный лечебный эффект, связанный со средним числом взрослых грибных комаров, отловленных на желтых липких карточках в 2019 г. (F = 13,44; df = 3, 7; P = 0,0004) (Рисунок 3) и 2020 г. (F = 9,25). ; df = 3, 7; P = 0,0019) (рис. 4), с большим количеством взрослых особей грибных комаров, захваченных на желтых липких карточках при обработке пастеризованным картофельным пюре Berger BM1 +. Однако не было значительных различий в среднем количестве взрослых особей грибных комаров, отловленных на желтых липких карточках, среди особей Бергера.
Обработка BM1, Pro-Mix BX + Mycorrhizae и Pro-Mix BX + Biofungicide + Mycorrhizae (Рисунки 3 и 4).

В заключение, на основании наших результатов, ни одна из протестированных сред, содержащих бактерии и арбускулярный микоризный гриб, не оказала никакого влияния на выживаемость куколок западных цветочных трипсов или личинок грибных комаров. Производители теплиц должны всегда оценивать точность заявлений производителей, прежде чем принимать решения о продуктах и ​​закупках для своих операций по выращиванию.